5.1.1 材料与方法-凯发娱乐

5.1.1 材料与方法

1.材料与试剂

样品:采购于恩施市菜市场。

试剂:三羟甲基氨基甲烷、乙酸、乙二胺四乙酸、丙烯酰胺、甲叉双丙烯酰胺、去离子甲酰胺、尿素、过硫酸铵、四甲基乙二胺、乙醇、冰醋酸、甲醛、硝酸银、氢氧化钠、mrs合成培养基:国药集团化学试剂有限公司;d5625-01 dna提取试剂盒、dna marker、pcr清洁试剂盒:北京科博汇智生物科技发展有限公司;2xpcr mix:南京诺唯赞生物科技有限公司;rtaq、dntp mix、pmd18-t vector:大连宝生物技术有限公司;正向引物338f(加入7个核苷酸标签barcodes)和反向引物806r、pcr引物合成和测序:武汉天一辉远生物科技有限公司。

2.仪器与设备

verititm 96-well thermal cycler pcr仪、nanodrop 2000/2000c:美国thermo fisher公司;dcodetm system:美国bio red公司;dyy-12电泳仪:北京六一仪器厂;miseq pe300高通量测序平台:美国illumina公司;r920机架式服务器:美国dell公司;ct15re冷冻离心机:日本hitachi公司;bio-5000 plus扫描仪:上海中晶科技有限公司;whitley dg250厌氧工作站:英国dws公司。

3.方 法

(1)样品宏基因组提取与检测

采用试剂盒方法提取腐乳样品中的宏基因组,用0.8%琼脂糖凝胶进行电泳检测,测定各样品宏基因组dna浓度。

(2)pcr-dgge

将宏基因组dna浓度调整为一致后作为模板细菌16s rrna v3区域基因片段pcr扩增。采用25 μl体系进行pcr扩增:10×pcr buffer(含mg2 )2.5 μl,dntp 2 μl,上下游引物各0.5 μl,rtaq 0.5 μl,模板1 μl,灭菌超纯水补充至25 μl。其中上游引物为all-gc-v3f(5’-cgcccggggcgcgccccgggcggcccgggggcaccgggggcctacggg aggcagcag-3’),下游引物为all-v3r(5’-attaccgcggctgctgg-3’)。扩增程序:95 °c 4 min,95 °c 30 s,55 °c 30 s,72 °c 30 s,30个循环,72 °c10 min。扩增结束后,pcr扩增产物用2%的琼脂糖凝胶电泳检测。(https://www.daowen.com)

采用8%的聚丙烯酰胺(丙烯酰胺∶甲叉双丙烯酰胺=38.93∶1.07)、变性范围为35%-52%(100%变性剂:尿素42 g,去离子甲酰胺40 ml)的凝胶进行分析。将凝胶置于温度为60 °c的0.5 x tae电泳缓冲液中,于每个胶孔点样10 μl,先电压120 v,持续80 min,后电压80 v,持续13h。电泳结束后,采用硝酸银法染色,使用扫描仪对电泳图进行观察拍照,找出各泳道优势条带并切胶,将胶块捣碎于50 μl无菌超纯水中,4 °c静置过夜。用不含gc夹的引物(all-v3f和all-v3r)将回收胶块进行pcr扩增,扩增体系及条件同上。用清洁试剂盒纯化pcr产物,并与载体(pmd18-t)连接后转化到感受态细胞中进行克隆培养,筛选阳性克隆菌液送往武汉天一辉远生物科技有限公司进行测序。使用bioedit软件将去除载体序列后在ncbi中进行同源性比对。

(3)样品细菌16s rrna pcr扩增及miseq高通量测序

参考王玉荣[15]方法进行样品细菌16s rrna pcr扩增及miseq高通量测序。采用20 μl扩增体系:5×pcr缓冲液4 μl,dntp mix 2 μl,上游引物338f(5’-actcctacgggaggcagca-3’)和下游引物806r(5’-ggactachvgggtwtctaat-3’)各0.8 μl,rtaq酶0.4 μl,模板10 ng,灭菌超纯水补充至20 μl。扩增条件为:95 °c预变性3 min,95 °c变性30 s,55 °c退火30 s,72 °c延伸45 s,共运行30个循环,72 °c延伸10 min。扩增结束后用1.0%琼脂糖凝胶电泳检测pcr扩增产物,合格后寄至上海美吉生物医药科技有限公司进行高通量测序。

(4)序列拼接及质量控制

参照于丹[16]和陈泽斌[17]的方法,在除去不合格序列、barcode序列和引物序列的基础上,将数据序列进行拼接。同时利用pynast软件将所有的序列对齐,采用uclust算法将相似度>97%序列划分为一个操作单元(operational taxonomic units,otu),从而进行物种鉴定和相对含量分析,对腐乳中的微生物多样性进行解析。

(5)腐乳中乳酸菌的分离与鉴定

腐乳样品中乳酸菌的分离采用倍比稀释涂布法。将各样品稀释液涂布于改良mrs固体培养基(含1.5% caco3)上,置于37 °c厌氧培养48 h,挑选具有不同特征且透明圈现象明显的菌落划线纯化。纯化后的菌株进行革兰氏染色镜检、过氧化氢试验及冻存。使用参考文献[18]提取各菌株dna,并参照张晓辉[19]方法使用正向引物27f(5’-agagtttgatcctggctcag-3’)和反向引物1495r(5’-ctacggctaccttgttacga-3’)进行pcr扩增和测序。测序结果分析同(3)。

4.数据处理

通过origin 8.5软件对dgge图谱特征条带序列进行统计,同时对样品的稀释曲线(rarefaction curve)及香农指数曲线(shannon diversity index curve)的作图。系统发育树由bioedit软件和mega 5.0软件共同绘制。使用office 2016绘制平均相对含量>5%的属水平饼图。venn图由在线绘图网页(http://bioinfogp.cnb.csic.es/tools/venny/index.html)进行绘制。相对含量>1.5%的核心otu热图由matlab 2010b绘制。